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双酶切的20μL反应体系和反应时间如何确定?最好是说明原理。所用的酶都是Takara公司的
如题所述
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第1个回答 2011-06-16
模板DNA 几百ng-几ug,区别不大
酶1 0.5ul
酶2 0.5ul
buffer 去Takara产品目录查双酶切buffer表,按照那个倍数加,有时候需要BSA
水补足 20ul
30或37度,1-5小时都可以。有个别酶需要55度。
注意,酶别加多了,
甘油
浓度过高影响酶的活性。反应体系中甘油浓度要小于1%,而酶是储存在50%甘油中。本回答被提问者采纳
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20
ul
双酶切体系和
10ul双酶切体系的区别
答:
1、产物浓度不同 20ul双酶切体系比10ul双酶切体系产物的浓度高。2、DNA反应量不同 20ul
双酶切体系所
含DNA要比10ul双酶切体系含有的DNA多,进行双酶切时所要切的DNA量也不同。研究中常用的双酶切体系就是20ul
双酶切体系和
10ul双酶切体系,二者除了调配比例之外,
所用的酶是
相同的,所以反应温...
Hind III 和Sal I
双酶切反应体系
答:
Incubate at 37°C
2-3小时
注意:最好用第一种方法,效果更好
酶切
技术的技术问题
答:
1、回收PCR产物:在进行PCR扩增时候,给引物两端设计好酶切位点,一般说来,限制酶的选择非常重要,尽量选择粘端酶切和那些酶切效率高的限制酶,如BamHI,HindIII,提前看好各公司的
双切酶所用
公用的BUFFER,以及各酶在公用BUFFER里的效率。选好酶切位点后,在各个酶的两边加上保护碱基。
双酶切时间
及...
在XhoⅠ和XbaⅠ限制性内切酶
双酶切体系
中,
反应体系是
什么?或者这两种酶...
答:
反应体系
应该指的是,两种酶同时使用时,应该用的buffer系统,且每一种酶的用量,DNA的用量,以及保证酶量不超过总反应体积的1/10,即20u
l体系
中,两个酶的总量不能超过2ul。你可以在内切酶公司网站上查到推荐的反应体系:从图上看,这两个酶在不能再另一个酶的推荐buffer中使用,只能用2X Tango ...
takara
公司的EcoR1和Not1 50
μl双酶切反应体系的
配制?
答:
酶
各加1.5 ul,底物加入在2ug,37℃,1*H Buffer+BSA,酶切12小时。
为什么
酶切
实验要求加样迅速,要在冰上进行操作?
答:
我觉得跟酶的活性有关.你希望反应只在你设定的条件下和时间范围内进行.但是一旦底物和酶混合,就有可能开始发应,这样子有两个可能问题,一是加样时,如果放在室温,而又不是酶的最佳反应温度,有可能出现非特异性反应,二是加样如果太慢,先加的样比后加的样总
反应时间
长太多,结果就产生误差.冰...
两种酶的
反应
缓冲液不一样,做
双酶切
时
如何
处理?
答:
如果是分开
酶切的
话,第一个酶切完成后要回收(可用醇回收,效率比较高)后,再进行第二次酶切。做转化的时候,进行酶连接反应时,注意保持低温状态,因为LIGASE酶很容易降解。为保险起见,一般连接3小时,16度;对含有AMP-RESISTENCE的质粒铺板时,注意加AMP时的温度,温度过高,会使克隆株无法筛选出来...
Xho1和Nde1 50
μl双酶切反应体系的
配制
??
答:
由这两种酶组成的
双酶切体系
并不需要添加BSA,请你仔细核对,两种酶的最适反应温度均为37摄氏度所以双酶切温度应为37摄氏度。如果选用
TaKaRa
的限制性内切酶那么Buffer应使用H Buffer,对于50
μl的酶
切体系而言应分别加入1.5 μl的Xho1和Nde1并且加入5 μl的10×H Buffer(使得酶切体系中的Buffer...
Takara
的NheI 和BamHI
双酶切体系
表中没有双酶切缓冲体系应该
如何
选用缓 ...
答:
1、如果你
用的是Takara的酶
,应该就只能分步了,而且BamHI还是30度反应,虽然也可以在37度切,但如果是分步切的话还是用30度吧。2、为什么不用NEB的酶呢?可以用buffer1或2同时切(好像是,你需要自己再确认下),而且NEB的这两种
酶都
有HF酶,效率更高,都可以在buffer4中达到100%的效率。以上,...
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