SOD酶的活力的测定

Question

化学法

Answer 1

　　SOD酶的活力的测定方法如下：
　　1.直接法 原理是根据O2 或产生O2 的物质本身的性质测定O2 的歧化量，从而确定SOD的活性。经典的直接法包括：脉冲辐射分解法、电子顺磁共振波法（EPR）、核磁共振法。由于所需的仪器设备价格昂贵，一般较少应用。

　　2.一般化学法 这些方法的共同特点是要有一个O2 的产生体系和一个被O2 还原或氧化的可检测体系。在SOD存在下，一部分O2 被SOD歧化，因而O2 还原或氧化检测体系的反应受到抑制。根据反应受抑制程度，测定SOD的活性。一般化学法有邻苯三酚自氧化法、细胞色素C还原法、羟胺法、黄嘌呤氧化酶-NBT法、肾上腺素法、没食子酸法、6-羟多巴胺法、亚硝酸盐形成法和碱性二甲亚砜法。

Answer 2

化学比色法，有试剂盒卖，南京建成出的，不贵，大概50样的要170元，很方便。

Answer 3

SOD酶的活力的测定方法如下：
1.直接法 原理是根据O2 或产生O2 的物质本身的性质测定O2 的歧化量，从而确定SOD的活性。经典的直接法包括：脉冲辐射分解法、电子顺磁共振波法（EPR）、核磁共振法。由于所需的仪器设备价格昂贵，一般较少应用。

2.一般化学法 这些方法的共同特点是要有一个O2 的产生体系和一个被O2 还原或氧化的可检测体系。在SOD存在下，一部分O2 被SOD歧化，因而O2 还原或氧化检测体系的反应受到抑制。根据反应受抑制程度，测定SOD的活性。一般化学法有邻苯三酚自氧化法、细胞色素C还原法、羟胺法、黄嘌呤氧化酶-NBT法、肾上腺素法、没食子酸法、6-羟多巴胺法、亚硝酸盐形成法和碱性二甲亚砜法。
可以喝乳酸菌发酵型奶粉，它能提高SOD酶活力，消除人体自由基，具有抗衰老、延年益寿作用
SOD酶是超氧化物歧化酶一种新型酶制剂。它在生物界的分布极广，几乎从动物到植物，从人到单细胞生物都有它的存在，SOD被视为生命科技中最具神奇的酶、人体内垃圾的清道夫。SOD是氧自由基的自然天敌，是机体内氧自由基的头号杀手，是生命健康之本。SOD在体内的水平高低意味着衰老与死亡的直观指标，现已证实，由氧自由基引发的疾病多达60多种。由于现代生活压力，环境污染，各种辐射和超量运动都会造成氧自由基大量形成，因此，发酵型乳酸菌可以提高SOD酶的活力，消除人体自由基，抑制氧化，从而具有抗衰老、延年益寿，保持年轻。
食用方法：每次25g，早晚各一次，取温开水搅拌均匀即可服用。
注意事项：不可用过高温度的水冲调，以免破坏奶粉中的高活性乳酸菌。
值得选择注意：1､看有效成分含量，是否有不良添加剂；2､看平台，资质是否齐全、是否有追溯机制，售后有保障。

Answer 4

超氧化物歧化酶（SOD）活力测定
实验材料、主要仪器和试剂

1．实验材料
小麦、玉米、水稻、棉花等新鲜叶片
2．主要仪器
（1）722型或其他型号的可见分光光度计
（2）万分之一分析天平
（3）高速冷冻离心机
（4）冰箱
（5）光照箱：4 500Lux
（6）带盖瓷盘 1个/处理
（7）移液管架
（8）研钵
（9）离心管 5mL数个
（10）微烧杯 10～15mL 8个/处理
（11）移液管或加样器 0.5mL×4；1mL×2；2mL×2；5mL×1
（12）微量进样器 50μL×2；100μL×2
（13）烧杯 50mL×3；100mL×5；500mL×1；1 000mL×2
（14）量筒 50mL×1；100mL×2
（15）容量瓶 50mL×1；100mL×5；250mL×1；1 000mL×2
（16）细口瓶 125mL×5
3．试剂
（1）0.1 mol/L pH7.8磷酸钠（Na2HPO4-NaH2PO4）缓冲液
A液（0.1 mol/L Na2HPO4溶液）：准确称取Na2HPO4· 12H2O（MW=358.14）3.5814g于100mL小烧杯中，用少量蒸馏水溶解后，移入100mL容量瓶中用蒸馏水定容至刻度，充分混匀。4℃冰箱中保存备用。
B液（0.1 mol/L NaH2PO4溶液）：准确称取NaH2PO4· 2H2O （MW=156.01）0.780g于50mL小烧杯中，用少量蒸馏水溶解后，移入50mL容量瓶中用蒸馏水定容至刻度，充分混匀。4℃冰箱中保存备用。
取上述A液183mL与B液17mL充分混匀后即为0.1 mol/L pH7.8的磷酸钠缓冲液。4℃冰箱中保存备用。
（2）0.026 mol/L 蛋氨酸（Met）磷酸钠缓冲液
准确称取L-蛋氨酸（C5H11NO2S，MW=149.21）0.3879g于100mL小烧杯中，用少量0.1 mol/L pH7.8的磷酸钠缓冲液溶解后，移入100mL容量瓶中并用0.1 mol/L pH7.8的磷酸钠缓冲液定容至刻度，充分混匀（现用现配）。4℃冰箱中保存可用1～2d。
（3）7.5 × 10－4 mol/L NBT溶液
准确称取NBT（C4OH3OCl2N10O6，MW=817.7）0.1533g于100mL小烧杯中，用少量蒸馏水溶解后，移入250mL容量瓶中用蒸馏水定容至刻度，充分混匀（现配现用）。4℃冰箱中保存可用2～3d。
（4）含1.0μmol/L EDTA的2 × 10－5 mol/L核黄素溶液
A液：准确称取EDTA（MW=292）0.00292g于50mL小烧杯中，用少量蒸馏水溶解。
B液：准确称取核黄素（MW=376.36）0.0753g于50mL小烧杯中，用少量蒸馏水溶解。
C液：合并A液和B液，移入100mL容量瓶中，用蒸馏水定容至刻度，此溶液为含0.1mmol/L EDTA的2mmol/L 核黄素溶液。4℃冰箱中保存可用8～10d。该溶液应避光保存，即用黑纸将装有该液的棕色瓶包好，置于4℃冰箱中保存。
当测定SOD酶活时，将C液稀释100倍，即为含1.0μmol/L EDTA的2 × 10－5 mol/L 核黄素溶液。
（5）0.05 mol/L pH7.8磷酸钠缓冲液
取0.1 mol/L pH7.8的磷酸钠缓冲液50mL，移入100mL容量瓶中用蒸馏水定容至刻度，充分混匀。4℃冰箱中保存备用。
（6）石英砂。
四、操作方法和步骤
1．酶液的制备
按每克鲜叶加入3mL 0.05 mol/L pH7.8磷酸钠缓冲液，加入少量石英砂，于冰浴中的研钵内研磨成匀浆，定容到5mL刻度离心管中，于8 500 r/min（10 000g）冷冻离心30min，上清液即为SOD酶粗提液。
2．酶活力的测定
每个处理取8个洗净干燥好的微烧杯编号，按表1加入各试剂及酶液，反应系统总体积为3mL。其中4～8号杯中磷酸钠缓冲液量和酶液量可根据试验材料中酶液浓度及酶活力进行调整（如酶液浓度大、活性强时，酶用量适当减少）。
各试剂全部加入后，充分混匀，取1号微烧杯置于暗处，作为空白对照，比色时调零用。其余7个微烧杯均放在温度为25℃，光强为4 500Lux的光照箱内（安装有3根20W的日光灯管）照光15min，然后立即遮光终止反应。在560nm波长下以1号杯液调零，测定各杯液光密度并记录结果。以2、3号杯液光密度的平均值作为抑制NBT光还原率100％，根据其他各杯液的光密度分别计算出不同酶液量的各反应系统中抑制NBT光还原的相对百分率。以酶液用量为横坐标，以抑制NBT光还原相对百分率为纵坐标，作出二者相关曲线。找出50％抑制率的酶液量（μL）作为一个酶活力单位（U）。

式中各因子代表内容如下：
A：为酶活力（酶活力单位：U/g（FW）·h）；
V：为酶提取液总体积（mL）；
B：为一个酶活力单位的酶液量（μL）；
W：为样品鲜重（g）；
T：为反应时间（min）；
1 000：为1mL = 1 000μL；
60：为1h = 60min。
3．抑制率按下式计算
抑制率=
D1—D2
×100％

D1

式中各因子代表内容如下：
D1：为2、3号杯液的光密度平均值；
D2：为加入不同酶液量的各杯液的光密度值。
注：有时因测定样品的数量多，每个样品均按此法测定酶活力工作量将会很大，也可每个样品只测定1个或2个酶液用量的光密度值，按下式计算酶活力。
A＝
(D1－D2) × V × 1000 × 60

D1 × B × W × T × 50％

式中各因子代表如下：
D1：为2、3号杯液的光密度平均值；
D2：为测定样品酶液的光密度；
50％：为抑制率50％；
其它各因子代表的内容与上述SOD酶活力计算公式的各因子代表的内容相同。
六、注意事项
1．富含酚类物质的植物（如茶叶）在匀浆时产生大量的多酚类物质，会引起酶蛋白不可逆沉淀，使酶失去活性，因此在提取此类植物SOD酶时，必须添加多酚类物质的吸附剂，将多酚类物质除去，避免酶蛋白变性失活，一般在提取液中加1～4％的聚乙烯吡咯烷酮（PVP）。
2．测定时的温度和光化反应时间必须严格控制一致。为保证各微烧杯所受光强一致，所有微烧杯应排列在与日光灯管平行的直线上。
植物叶片在衰老过程中发生一系列生理生化变化，如核酸和蛋白质含量下降、叶绿素降解、光合作用降低及内源激素平衡失调等。这些指标在一定程度上反映衰老过程的变化。近来大量研究表明，植物在逆境胁迫或衰老过程中，细胞内自由基代谢平衡被破坏而有利于自由基的产生。过剩自由基的毒害之一是引发或加剧膜脂过氧化作用，造成细胞膜系统的损伤，严重时会导致植物细胞死亡。自由基是具有未配对价电子的原子或原子团。生物体内产生的自由基主要有超氧自由基（O2.－）、羟自由基（OH.）、过氧自由基（ROD）、烷氧自由基（RO）等。植物细胞膜有酶促和非酶促两类过氧化物防御系统，超氧化物歧化酶（SOD）、过氧化氢酶（CAT）、过氧化物酶（POD）和抗坏血酸过氧化物酶（ASA-POD）等是酶促防御系统的重要保护酶。抗坏血酸（VC）、VE和还原型谷胱甘肽（GSH）等是非酶促防御系统中的重要抗氧化剂。SOD、CAT等活性氧清除剂的含量水平和O2.－、H2O2、OH. 和O2等活性氧的含量水平可作为植物衰老的生理生化指标。
自1968年发现SOD后，立刻引起科学界的高度重视，近40年来这方面的研究进展非常迅速，它的应用领域日益拓宽，SOD也有了产品。二十世纪80年代后期，我国关于SOD的研究及应用也形成了热点，如今已在化妆品添加剂、饮料及医药方面显示了特殊效果。
超氧自由基（O2.－）是生物细胞某些生理生化反应常见的中间产物。自由基是本身带有不成对价电子的分子、原子、原子团或离子，化学性质非常活泼，是活性氧的一种。如果细胞中缺乏清除自由基的酶时，机体就会受到各种损伤。超氧化物歧化酶（Superoxide Dismutase），简称SOD，能通过歧化反应清除生物细胞中的超氧自由基（O2.－），生成H2O2和O2。H2O2由过氧化氢酶（CAT）催化生成H2O和O2，从而减少自由基对有机体的毒害。
。

Answer 5

超氧化物歧化酶（SOD）活力测定
植物叶片在衰老过程中发生一系列生理生化变化，如核酸和蛋白质含量下降、叶绿素降解、光合作用降低及内源激素平衡失调等。这些指标在一定程度上反映衰老过程的变化。近来大量研究表明，植物在逆境胁迫或衰老过程中，细胞内自由基代谢平衡被破坏而有利于自由基的产生。过剩自由基的毒害之一是引发或加剧膜脂过氧化作用，造成细胞膜系统的损伤，严重时会导致植物细胞死亡。自由基是具有未配对价电子的原子或原子团。生物体内产生的自由基主要有超氧自由基（O2.－）、羟自由基（OH.）、过氧自由基（ROD）、烷氧自由基（RO）等。植物细胞膜有酶促和非酶促两类过氧化物防御系统，超氧化物歧化酶（SOD）、过氧化氢酶（CAT）、过氧化物酶（POD）和抗坏血酸过氧化物酶（ASA-POD）等是酶促防御系统的重要保护酶。抗坏血酸（VC）、VE和还原型谷胱甘肽（GSH）等是非酶促防御系统中的重要抗氧化剂。SOD、CAT等活性氧清除剂的含量水平和O2.－、H2O2、OH. 和O2等活性氧的含量水平可作为植物衰老的生理生化指标。

自1968年发现SOD后，立刻引起科学界的高度重视，近40年来这方面的研究进展非常迅速，它的应用领域日益拓宽，SOD也有了产品。二十世纪80年代后期，我国关于SOD的研究及应用也形成了热点，如今已在化妆品添加剂、饮料及医药方面显示了特殊效果。

超氧自由基（O2.－）是生物细胞某些生理生化反应常见的中间产物。自由基是本身带有不成对价电子的分子、原子、原子团或离子，化学性质非常活泼，是活性氧的一种。如果细胞中缺乏清除自由基的酶时，机体就会受到各种损伤。超氧化物歧化酶（Superoxide Dismutase），简称SOD，能通过歧化反应清除生物细胞中的超氧自由基（O2.－），生成H2O2和O2。H2O2由过氧化氢酶（CAT）催化生成H2O和O2，从而减少自由基对有机体的毒害。

一、目的

学习和掌握氯化硝基四氮唑蓝（NBT）光化还原法测定SOD活力的方法和原理，并了解SOD的作用特性。

二、原理

SOD是含金属辅基的酶。高等植物含有两种类型的SOD：Mn－SOD和Cu.Zn－SOD，它们都催化下列反应：

由于超氧自由基（O2.－）为不稳定自由基，寿命极短，测定SOD活性一般为间接方法。并利用各种呈色反应来测定SOD的活力。核黄素在有氧条件下能产生超氧自由基负离子O2.－，当加入NBT后，在光照条件下，与超氧自由基反应生成单甲月替 （ 黄 色 ） ，继而还原生成二甲月替 ，它是一种蓝色物质，在560nm波长下有最大吸收。当加入SOD时，可以使超氧自由基与H+结合生成H2O2和O2，从而抑制了NBT光还原的进行，使蓝色二甲月替 生成速度减慢。通过在反应液中加入不同量的SOD酶液，光照一定时间后测定560nm波长下各液光密度值，抑制NBT光还原相对百分率与酶活性在一定范围内呈正比，以酶液加入量为横坐标，以抑制NBT光还原相对百分率为纵坐标，在坐标纸上绘制出二者相关曲线，根据SOD抑制NBT光还原相对百分率计算酶活性。找出SOD抑制NBT光还原相对百分率为50％时的酶量作为一个酶活力单位（U）。

三、实验材料、主要仪器和试剂

1．实验材料

小麦、玉米、水稻、棉花等新鲜叶片

2．主要仪器

（1）722型或其他型号的可见分光光度计

（2）万分之一分析天平

（3）高速冷冻离心机

（4）冰箱

（5）光照箱：4 500Lux

（6）带盖瓷盘 1个/处理

（7）移液管架

（8）研钵

（9）离心管 5mL数个

（10）微烧杯 10～15mL 8个/处理

（11）移液管或加样器 0.5mL×4；1mL×2；2mL×2；5mL×1

（12）微量进样器 50μL×2；100μL×2

（13）烧杯 50mL×3；100mL×5；500mL×1；1 000mL×2

（14）量筒 50mL×1；100mL×2

（15）容量瓶 50mL×1；100mL×5；250mL×1；1 000mL×2

（16）细口瓶 125mL×5

3．试剂

（1）0.1 mol/L pH7.8磷酸钠（Na2HPO4-NaH2PO4）缓冲液

A液（0.1 mol/L Na2HPO4溶液）：准确称取Na2HPO4· 12H2O（MW=358.14）3.5814g于100mL小烧杯中，用少量蒸馏水溶解后，移入100mL容量瓶中用蒸馏水定容至刻度，充分混匀。4℃冰箱中保存备用。

B液（0.1 mol/L NaH2PO4溶液）：准确称取NaH2PO4· 2H2O （MW=156.01）0.780g于50mL小烧杯中，用少量蒸馏水溶解后，移入50mL容量瓶中用蒸馏水定容至刻度，充分混匀。4℃冰箱中保存备用。

取上述A液183mL与B液17mL充分混匀后即为0.1 mol/L pH7.8的磷酸钠缓冲液。4℃冰箱中保存备用。

（2）0.026 mol/L 蛋氨酸（Met）磷酸钠缓冲液

准确称取L-蛋氨酸（C5H11NO2S，MW=149.21）0.3879g于100mL小烧杯中，用少量0.1 mol/L pH7.8的磷酸钠缓冲液溶解后，移入100mL容量瓶中并用0.1 mol/L pH7.8的磷酸钠缓冲液定容至刻度，充分混匀（现用现配）。4℃冰箱中保存可用1～2d。

（3）7.5 × 10－4 mol/L NBT溶液

准确称取NBT（C4OH3OCl2N10O6，MW=817.7）0.1533g于100mL小烧杯中，用少量蒸馏水溶解后，移入250mL容量瓶中用蒸馏水定容至刻度，充分混匀（现配现用）。4℃冰箱中保存可用2～3d。

（4）含1.0μmol/L EDTA的2 × 10－5 mol/L核黄素溶液

A液：准确称取EDTA（MW=292）0.00292g于50mL小烧杯中，用少量蒸馏水溶解。

B液：准确称取核黄素（MW=376.36）0.0753g于50mL小烧杯中，用少量蒸馏水溶解。

C液：合并A液和B液，移入100mL容量瓶中，用蒸馏水定容至刻度，此溶液为含0.1mmol/L EDTA的2mmol/L 核黄素溶液。4℃冰箱中保存可用8～10d。该溶液应避光保存，即用黑纸将装有该液的棕色瓶包好，置于4℃冰箱中保存。

当测定SOD酶活时，将C液稀释100倍，即为含1.0μmol/L EDTA的2 × 10－5 mol/L 核黄素溶液。

（5）0.05 mol/L pH7.8磷酸钠缓冲液

取0.1 mol/L pH7.8的磷酸钠缓冲液50mL，移入100mL容量瓶中用蒸馏水定容至刻度，充分混匀。4℃冰箱中保存备用。

（6）石英砂。

四、操作方法和步骤

1．酶液的制备

按每克鲜叶加入3mL 0.05 mol/L pH7.8磷酸钠缓冲液，加入少量石英砂，于冰浴中的研钵内研磨成匀浆，定容到5mL刻度离心管中，于8 500 r/min（10 000g）冷冻离心30min，上清液即为SOD酶粗提液。

2．酶活力的测定

每个处理取8个洗净干燥好的微烧杯编号，按表1加入各试剂及酶液，反应系统总体积为3mL。其中4～8号杯中磷酸钠缓冲液量和酶液量可根据试验材料中酶液浓度及酶活力进行调整（如酶液浓度大、活性强时，酶用量适当减少）。

各试剂全部加入后，充分混匀，取1号微烧杯置于暗处，作为空白对照，比色时调零用。其余7个微烧杯均放在温度为25℃，光强为4 500Lux的光照箱内（安装有3根20W的日光灯管）照光15min，然后立即遮光终止反应。在560nm波长下以1号杯液调零，测定各杯液光密度并记录结果。以2、3号杯液光密度的平均值作为抑制NBT光还原率100％，根据其他各杯液的光密度分别计算出不同酶液量的各反应系统中抑制NBT光还原的相对百分率。以酶液用量为横坐标，以抑制NBT光还原相对百分率为纵坐标，作出二者相关曲线。找出50％抑制率的酶液量（μL）作为一个酶活力单位（U）。

表1 反应系统中各试剂及酶液的加入量（mL）

试 剂

杯 号
试剂（5）
试剂（2）
试剂（3）
酶 液
试剂（4）

1
0.9
1.5
0.3
0
0.3

2
0.9
1.5
0.3
0
0.3

3
0.9
1.5
0.3
0
0.3

4
0.85
1.5
0.3
0.05
0.3

5
0.80
1.5
0.3
0.10
0.3

6
0.75
1.5
0.3
0.15
0.3

7
0.70
1.5
0.3
0.20
0.3

8
0.65
1.5
0.3
0.25
0.3

五、结果计算

1．560nm波长下各杯液的光密度（表2）

表2 测定数据列表

杯 号
1
2
3
4
5
6
7
8
2、3号平均值

酶液量（mL）
0
0
0
0.05
0.10
0.15
0.20
0.25
—

光密度（OD560nm）
0

抑制率（％）
—
100
100

100

以酶液加入量为横坐标，以抑制NBT光还原相对百分率为纵坐标，在坐标纸上绘制出二者相关曲线。找出50％抑制率的酶液量（μL）作为一个酶活力单位（U）。

2．SOD酶活力按下式计算

A＝
V × 1000 × 60

B × W × T

式中各因子代表内容如下：

A：为酶活力（酶活力单位：U/g（FW）·h）；

V：为酶提取液总体积（mL）；

B：为一个酶活力单位的酶液量（μL）；

W：为样品鲜重（g）；

T：为反应时间（min）；

1 000：为1mL = 1 000μL；

60：为1h = 60min。

3．抑制率按下式计算

抑制率=
D1—D2
×100％

D1

式中各因子代表内容如下：

D1：为2、3号杯液的光密度平均值；

D2：为加入不同酶液量的各杯液的光密度值。

注：有时因测定样品的数量多，每个样品均按此法测定酶活力工作量将会很大，也可每个样品只测定1个或2个酶液用量的光密度值，按下式计算酶活力。

A＝
(D1－D2) × V × 1000 × 60

D1 × B × W × T × 50％

式中各因子代表如下：

D1：为2、3号杯液的光密度平均值；

D2：为测定样品酶液的光密度；

50％：为抑制率50％；

其它各因子代表的内容与上述SOD酶活力计算公式的各因子代表的内容相同。

六、注意事项

1．富含酚类物质的植物（如茶叶）在匀浆时产生大量的多酚类物质，会引起酶蛋白不可逆沉淀，使酶失去活性，因此在提取此类植物SOD酶时，必须添加多酚类物质的吸附剂，将多酚类物质除去，避免酶蛋白变性失活，一般在提取液中加1～4％的聚乙烯吡咯烷酮（PVP）。

2．测定时的温度和光化反应时间必须严格控制一致。为保证各微烧杯所受光强一致，所有微烧杯应排列在与日光灯管平行的直线上。

参考资料：http://www.scuta.edu.cn/yuanxi/bylw/syzd/srdsyzdsy21.htm

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